Materiał zachowany w kulturze i szklarni

Pelecyphora macromeris (Engelm.) D.Aquino & Dan.Sánchez jest przyjętą nazwą gatunku dawniej ujmowanego jako Coryphantha macromeris (Engelm.) Britton & Rose. Kombinację w Pelecyphora opublikowano w 2022 r. Naturalny zasięg obejmuje południowy Nowy Meksyk, zachodni Teksas i północno-wschodni Meksyk. Badanie Cabañas-García i współautorów z 2019 r. posługuje się nazwą Coryphantha macromeris. Materiał oznaczono na poziomie gatunku. [2-WWW][Cabañas-García i wsp. 2019, POWO, 11 października 2026; Cabañas-García i wsp., s. 1, 13]

Rośliny pochodziły z banku kultur in vitro Uniwersytetu Autonomicznego w Aguascalientes. Przez rok utrzymywano je na MS z 3% sacharozy i 8 g/l agaru, przy 25°C, szesnastogodzinnym dniu i około 40 µmol fotonów/m²/s. Po aklimatyzacji pozostawały jeszcze rok w szklarni. Oznaczenie udokumentowano okazem HUAA 6386. Tak przygotowane rośliny były źródłem obu ekstraktów, porównywanych według części rośliny. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 13, Plant Material]

Przygotowanie dwóch ekstraktów

Korzenie oddzielono od części nadziemnych. Materiał rozdrobniono i suszono przez tydzień w 40°C, w ciemności. Sproszkowane próbki trzykrotnie ekstrahowano metanolem w trzydziestominutowej kąpieli ultradźwiękowej. Po odparowaniu rozpuszczalnika przygotowano roztwory ekstraktów o stężeniu 2,5 mg/ml do analizy. Taka procedura określa, jakie związki mogły znaleźć się w badanej frakcji. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 13, Sample Preparation]

Zastosowano ultrawysokosprawną chromatografię cieczową z detekcją widma UV i wysokorozdzielczą tandemową spektrometrią mas. Chromatografia rozdziela składniki mieszaniny w czasie, a pomiar masy i fragmentacji jonów dostarcza informacji o ich możliwej budowie. Analizę prowadzono w trybie jonów ujemnych, z dokładnością masy lepszą niż 5 ppm. Oceniano czas retencji, widmo UV, masę jonów i produkty ich rozpadu. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 13–14, LC Parameters and MS Parameters]

Sześćdziesiąt przypisań i dziewięć sygnałów nieznanych

W obu ekstraktach łącznie rozdzielono 69 sygnałów. Sześćdziesięciu nadano wstępne identyfikacje, a dziewięć pozostało nieznanych. W tabeli wyników autorzy określają identyfikacje jako przypuszczalne. Proponowane struktury opierają się na charakterystyce jonów i porównaniu z danymi literaturowymi. Przypisania dotyczą składników mieszaniny ekstraktu, analizowanych tą metodą. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 2–10, tab. 1]

Dwadzieścia sześć sygnałów wykryto wyłącznie w częściach nadziemnych, dziewiętnaście wyłącznie w korzeniach i dwadzieścia cztery w obu ekstraktach. Liczby opisują obecność sygnałów w jakościowej analizie obu frakcji. Pokrywająca się część profilu wskazuje związki proponowane w obu częściach rośliny, w zakresie czułości zastosowanej procedury. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 2–12, tab. 1]

Wśród często rozpoznawanych grup znalazły się kwas ferulowy, jego izomery i pochodne oraz kwas określany w publikacji jako piscidic acid i jego pochodne. Kwas ferulowy i kwas fertarowy proponowano w obu frakcjach. Część przypisań pochodnych tego kwasu występowała tylko w materiale nadziemnym, inne w korzeniach lub w obu częściach. Zestawienie dotyczyło profilu chromatograficznego i fragmentacji jonów, z zachowaniem stopnia pewności identyfikacji z tabeli. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 4–8, tab. 1]

Autorzy zwracali uwagę na stosunkowo duże sygnały niektórych kwasów fenolowych. Wysokość sygnału zależy od ekstrakcji i odpowiedzi związku podczas jonizacji. Autorzy oceniali względną wielkość pików w profilu chromatograficznym. Analiza miała charakter jakościowy, a podane stężenie 2,5 mg/ml odnosiło się do całego ekstraktu w próbce analitycznej. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 11–14, Dyskusja i metody]

Zakres analizy materiału szklarniowego

Dyskusja odwołuje się do aktywności biologicznej niektórych proponowanych związków, znanej z innych publikacji. Część doświadczalna tej pracy obejmowała analizę chemiczną ekstraktów. Wyniki określają proponowaną obecność i rozmieszczenie substancji w materiale szklarniowym. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 11–14]

Profil uzyskano po opisanej historii wzrostu w kulturze i szklarni. Porównanie obejmowało korzenie i części nadziemne tego materiału. Liczba niezależnych roślin tworzących każdą próbkę pozostała w raporcie nieokreślona, więc jednostką przedstawionego porównania są frakcje ekstraktu. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 13–14, Materiał i metody]

Zestawienie korzeni i części nadziemnych stanowi podstawę chemicznego opisu zachowanego materiału. Wskazuje sygnały wspólne i swoiste dla poszczególnych frakcji oraz grupy wymagające rozstrzygnięcia struktury. Sformułowana przez autorów możliwość wykorzystania biotechnologicznego dotyczy dalszego poznania i pozyskiwania związków. Przedstawiony raport pozostaje badaniem profilu ekstraktów. [Cabañas-García i wsp. 2019, s. 11–14, Dyskusja i wnioski]

Podstawa opracowania
Artykuł2019

Phytochemical Profiling of Coryphantha macromeris (Cactaceae) Growing in Greenhouse Conditions Using Ultra-High-Performance Liquid Chromatography–Tandem Mass Spectrometry

Cabañas-García E., Areche C., Jáuregui-Rincón J., Cruz-Sosa F., Pérez-Molphe Balch E., Phytochemical Profiling of Coryphantha macromeris (Cactaceae) Growing in Greenhouse Conditions Using Ultra-High-Performance Liquid Chromatography–Tandem Mass Spectrometry, Molecules, 2019, 24(4):705, doi: 10.3390/molecules24040705

Ekstrakty metanolowe korzeni i części nadziemnych szklarniowej Coryphantha macromeris analizowano metodą UHPLC z detekcją UV i wysokorozdzielczą spektrometrią mas. Rozdzielono 69 sygnałów, z których 60 wstępnie przypisano związkom na podstawie danych spektrometrii i literatury. Profile obu części rośliny częściowo się pokrywały, a wiele przypisań dotyczyło kwasów fenolowych i ich pochodnych.

Biotechnologia i zastosowaniaRodzajCoryphanthaPelecyphora
[2-WWW]Portal źródłowy

Plants of the World Online — Royal Botanic Gardens, Kew

https://powo.science.kew.org/

Nazwy przyjęte, synonimy i rozmieszczenie. Cytowanie przy taksonie prowadzi do jego rekordu.

Dostęp 2026-10-08.